[LT] Išradimas apima išvalytų ribonukleazės dimerų gavimo būdą, į kurį įeina monomerinės ribonukleazės dimerizacijos stadija, panaudojant suberimidatinį sujungiantį reagentą, nedimerizuotų monomerų ir oligomerų nufiltravimo iš tirpalo stadija, panaudojant keletą chromatografinių etapų per jonitines dervas, realcijos eigos kontrolė, panaudojant gel-elektroforezę, ir išvalyto ribonukleazės dimerino produkto surinkimas. Gavimo būdo privalumai yra tokie, kad efektyviai ir palyginus nebrangiai galima gauti didelius produkto kiekius, ir tai, kad ribonukleazės dimerai dėl jų tinkamo poviekio gali būti naudojami kovai su virusinėmis ir bakterinėmis infekcijomis. Jie neturi citotoksinio poveikio, paprastai būdingo ribonukleazės monomerams.
[EN]
[0001] Išradimas apima ribonukleazės dimero, kuris gali būti naudojamas gydant virusines ir bakterines infekcijas, gavimo ir valymo būdą.
[0002] Kaskart vis didėjantis bakterinių ir virusinių, ligas sukeliančių kamienų, atsparių antibiotikams, skaičius reikalauja, kad žmonių gydymui būtų naudojami naujo tipo vaistai. Tarp šiuo metu taikomų naujų gydymo metodų ir įvairiomis ligomis sergantiems ligoniams gydyti skirtų vaistų tam tikrą pripažinimą įgijo fermentų monomerai. Kai kuriais atvejais fermentų taikymas būtinas todėl, kad, esant kai kuriems susirgimo simptomams, pastebimas fermentų aktyvumo sumažėjimas. Fermentai priskiriami katalitiškai aktyvių baltymų grupei, ir jie dalyvauja visuose organizme vyks-tančiuose gyvybiškai svarbiuose procesuose. Kadangi fermentai pasižymi fizikocheminiu, fiziologiniu arba biologiniu veikimu, daug jų yra išskirta tiek indi-vidualioje būsenoje, tiek ir tam tikruose deriniuose. Prie tokių fermentų, kurie turi gydantįjį efektą, arba kurių aktyvumas sumažėja, esant kai kuriems susirgimo simptomams, priklauso ir ribonukleazės. Ribonukleazės sudaro grupę nukleininių fermentų, paprastai randamų daugelyje gyvūnų ir augalų organizmų. Ribonukleazės savybių ir jos išskirimo metodų tyrimą pradėjo Schmidt ir McDonald 50-ųjų metų viduryje. Tarp daugelio atradimų, susijusių su šiuo fermentu, buvo ir tai, kad vėžiniam audiniui yra charakteringas labai sumažintas jo ribonukleazių aktyvumas. Vienu atveju buvo rasta, kad leukozinės pelės turi labai sumažintą rūgštinės ribonukleazės aktyvumą, stebimą, tarp kitko, mito-chondrijų ir mikrosomų frakcijose, gautose iš gyvuliukų blužnies. Panašūs tyrimai rodo, kad ribonukleazę galbūt galima taikyti profilaktikai arba kovai su virusine leukemij a.
[0003] Deja, ribonukleazės pritaikymo potencialios galimybės nebuvo realizuotos pirmiausia dėl to, kad šio fermento monomerinė forma buvo labai citotoksiška. Pavyzdžiui, bandymuose su kultivuojamais fibroplastais pastebėtas citotoksinis poveikis, įvedus netgi ypač mažus mono-merinės ribonukleazės kiekius. Iš to, kas pasakyta, seka, kad būtinai reikalinga maksimaliai išnaudoti potencialias ribonukleazės galimybes, tuo pačiu metu suvedant d, minimumą jos monomerinės formos citotoksini, poveiki,.
[0004] Neseniai rasta, kad iš ribonukleazės galima pagaminti priešvirusinę arba antibakterinę kompoziciją, netu-rinčią citotoksinio poveikio, jei tokią kompoziciją padaryti iš fermento dimerinės formos. Buvo nustatyta, kad ribonukleazės dimero kompozicijos taikymas yra efektyvus, gydant eilę infekcinių susirgimų, ir ši kompozicija neturi stipraus citotoksinio poveikio, paprastai susijusio su ribonukleazės monomeru. Ribonukle-azės dimerų taikymas įvairiuose gydymo kursuose aprašy-tas šiuo metu nagrinėjamoje paraiškoje PCT /US 88/ 01785.
[0005] Nors ribonukleazės dimerinės formos gavimo iš jos monomerinės formos būdai ir yra žinomi, didelę reikšmę turi didelių dimerinės formos kiekių gavimas nebrangiu ir efektyviu būdu. Taigi, labai pageidautina sukurti tokią didelių išvalyto ribonukleazės dimero kiekių gavimo ir analizės sistemą, kad ribonukleazės dimere būtų minimalūs priemaišų, tokių kaip monomerai, multi-merai arba kitos užteršiančios medžiagos, kiekiai.
[0006] Pagal ši, išradimą, ribonukleazės dimero galutiniam produktui gauti numatomos šios stadijos: a) ribonukleazės tirpalo paruošimas, tirpinant ribonu-kleazę buferiniame tirpale ir nustatant pH lygų ma-žiausiai 9; b) suberimidatinės (turinčios suberino rūgšties imi-datą) sujungiančios medžiagos, tokios kaip dimetilsuberimidatas, pridėjimas, kad įvyktų ribonukleazės monomerų dimerizacija tirpale, palaikant tirpalo pH 9 arba didesni,; c) pH sumažinimas apytikriai iki 7, kad dimerizacijos reakcija sustotų šiame lygyje; d) dimerizuotos ribonukleazės tirpalo gryninimas, panaudojant pirmą filtravimo etapą, kuriame tirpalas leidžiamas per jonitinę dervą ir surenkamos frakcijos, turinčios dideli, ribonukleazės dimerinės formos kieki,; e) antrasis filtravimo etapas, kuriame pirmajame filtravimo etape surinktos frakcijos leidžiamos per jonitinę dervą; f) didelio švarumo laipsnio ribonukleazės dimero, gauto iš antrojo filtravimo etapo, surinkimas.
[0007] Naudojant aukščiau aprašytą metodą, galima pagaminti didelius kiekius ribonukleazės dimero, kaip galutinio produkto, kuris yra ypatingai naudingas gydant įvairius virusinius ir bakterinius susirgimus.
[0008] 1 ir 2 brėž. grafiškai pavaizduota šio išradimo jonų mainų chromatografijos eliuavimo charakteris.
[0009] Pagal ši, išradimą gaminant ribonukleazės dimerinę for-mą, kaip pradiniai produktai gali būti naudojami bet kokie šiuo metu prieinami ribonukleazės monomerai. Šiame išradime buvo naudojami ribonukleazės monomerai, gauti iš firmos Servą Feine Biochemica, GmbH, Hei-delberg ir turintys katalogini, Nr. 28260. Gali būti naudojami ribonukleazės A arba bet kokios iš prieinamų ribonukleazių monomerai. Ribonukleazės monomerai pa-ruošiami sujungimo reakcijai, tirpinant juos fosfa-tiniame buferyje kambario temperatūroje; taip gaunamas ribonukleazės monomero tirpalas. Rekomenduojama naudoti 0, 1 M buferini, dinatrio hidrofosfato dihidrato tirpalą, kuriame ištirpinamas monomeras, nepertraukiamai maišant tirpalą mažiausiai 2 valandas. Tinkamas buferinis tirpalas buvo gautas, tirpinant apie 70 g dinatrio hidrofosfato dihidrato apytikriai 1000 ml vandens. Nors tikslūs reagentų ir tirpalų, naudojamų šiame išradime aprašytame gavimo būde, kiekiai gali skirtis, šio išradimo dimerizacijos reakcija vykdoma tirpale, kur 40- 60 g ribonukleazės monomero ištirpinta 5 1 dinatrio hidrofosfato dihidrato buferio. Be to, rekomenduojama nustatyti monomero tirpalo pH mažiausiai 9, geriau 10. pH nustatymui galima naudoti 0, 1 N NaOH.
[0010] Dimerizacijos reakcija inicijuojama, pridedant kaip sujungiančios medžiagos, tam tikrą suberimidato kieki, ribonukleazės monomero tirpalą ir nustatant pH reikšmę mažiausiai 9 arba didesnę, geriau 10 ( ±0, 2). Sujun-giančia medžiaga šiame išradime rekomenduojama naudoti dimetilsuberimidatą, bet gali būti naudojami ir kiti suberimidatiniai sujungiantys reagentai. Į monomero tirpalą, pagamintą pagal aukščiau duotą aprašymą, rekomenduojama pridėti 4- 6 g dimetilsuberimidato, kuris ištirpsta per 1 min. Nepertraukiamai maišant magnetiniu maišikliu arba kitokiu prietaisu, kambario tempe-ratūroje ( 25±5°C) reakcija vyksta 30- 60 minučių. Reak-ciją galima nutraukti, sumažinant tirpalo pH, pridėjus HCl tirpalo, kad pH pasidarytų 7 ( ±0, 2). Po to, rekomenduojama koncentruoti gautą mišinį, panaudojant tangentinio srauto sistemą, kuri detaliai aprašyta žemiau.
[0011] Tam tikrais laiko tarpais nuo sujungimo reakcijos pra-džios rekomenduojama imti iš tirpalo mėginius analizei ir juos analizuoti naudojant gel-elektroforezę. Gel-elektroforezės tyrimai parodė, kad nors monomerinė fermento forma ir aiškiai matoma beveik visuose anali-zuojamuose mėginiuose, juostelė, atitinkanti ribonukle-azės dimerinę formą, jau matoma, praėjus 10 min. nuo reakcijos pradžios. Fermento dimerinę formą atitinkanti juostelė aiškiai matoma apytikriai po 15 min., ir ji vis ryškėja, vykstant reakcijai. Be to, maždaug po 30 min., skaičiuojant nuo sujungiančio reagento pridė-jimo momento, galima pastebėti fermento oligomerinių formų susidarymą. Monomerinė ribonukleazės forma turi molekulinę masę 15000, o dimerinė forma - dvigubai didesnę.
[0012] Norint gauti didelius išvalytos ribonukleazės dimero kiekius, rekomenduojama dimerizuotos ribonukleazės tir-palą filtruoti mažiausiai dviem etapais, kad būtų išskirti ribonukleazės dimerai ir pašalinta monomerinė arba polimerinė ribonukleazė. Atskirti nedimerizuoti ribonukleazės monomerai gali būti surinkti, ir šiame išradime rekomenduojama vėl juos leisti i, procesą, kad dar labiau būtų padidintas fermento dimerinės formos gavimo efektyvumas.
[0013] Oligomerams atskirti iš dimerizuotos ribonukleazės tirpalo rekomenduojama tirpalą filtruoti per jonitinę dervą. Šiame išradimo realizavimo variante filtruojama per kolonėlę, užpildytą jonitine derva Sefadeks. Kolonėlė su Sefadeksu turi apie 25 cm diametrą ir apie 120 cm aukšti,. Ji perplaunama maždaug 60 litrų 50 mM amonio hidrokarbonato tirpalu, kurio pH 8,6. Toks karbonatinis buferis gaminamas iš 4 g amonio hidrokarbonato ir 1000 ml vandens. Visas aukščiau aprašytu būdu gautas ribonukleazės tirpalas supilamas i, kolonėlę ir eliuuojama reguliuojančiu buferiu. Frakcijos renkamos frakcijų kolektoriumi, pvz. LKB 2211 Suprec; tirpalo tekėjimo greitis apie 80 ml/min. Eliuavimo charakteris registruojamas registruojančiu prietaisu, tokiu kaip saviraštis LKB 2210, matavimo greitis 0.5 mm/min, o absorbcija gali būti nustatyta KB UVICOR SII prietaisu, kai A=280 nm.
[0014] Eliuavimo charakteris šiame filtravimo etape paprastai išreiškiamas trimis pikais: pirmą piką duoda ribo-nukleazės polimerai, antrasis pikas atitinka dimerus ir paskutinysis atitinka likusio monomerinio fermento kiekį. Šiame etape taip pat rekomenduojama analizuoti atskiras surinktas frakcijas gel-elektroforezės metodu. Panaši analizė gali būti atlikta SDS-poliakrilamidinio gelio elektroforezės (PAGE) metodu pagal Thomas ir kt. PNAS, 12., 2626 (1975) metodiką. Pagal šią metodiką rekomenduojama maždaug 50 fi 1 mėgini, iš kiekvienos surinktos frakcijos sumaišyti su apytikriai 50 [i 1 dengiančio buferio ir šildyti apie 10 min. 95°C temperatūroje. Tada maždaug 25 fil gauto mišinio įpilama 1, gelio duobutę. Elektroforezė vykdoma maždaug 4 vai., esant 20-35 mA srovei; taip išsiskirsto atskiros fermento formos. Baltymo juostelės tampa matomos, dažant tokiais dažais, kaip Cumassi mėlynasis R 250 (Merck).
[0015] Toks metodas, kaip SDS-PAGE elektroforezė, leidžia identifikuoti ir surūšiuoti frakcijas, kuriose yra monomerinės, dimerinės ir oligomerinės ribonukleazės formos arba jų mišiniai. Išsiaiškinus frakcijų sudėtį, tos frakcijos, kuriose pagrindinai yra dimerinė forma, yra atskiriamos ir supilamos kartu. Šias dimero frakcijas rekomenduojama vėl sukoncentruoti iki 800 ml, panaudojant tangentinio srauto sistemą. Tangentinio srauto sistemos membraninė diafragma gali būti vėl perplauta atitinkamu tirpikliu, ir taip gali būti sulaikyti dideli dimero kiekiai. Rekomenduojama sukon-centruotą tirpalą liofilizuoti ir laikyti apie 4°C temperatūroje iki papildomo apdirbimo. Idealiu atveju liofilizuojama supilant apie 200 ml tirpalo porciją i, 500 ml talpos apvaliadugnę kolbą, kuri skysto azoto atmosferoje patalpinama i, rotorini, garintuvą. Kolba gerai užkemšama ir išlaikoma 30 min. -30°C tempe-ratūroje, po to liofilizuojama.
[0016] Kadangi pradinės medžiagos dažniausiai yra brangios, ypatingai rekomenduojama nufiltruotus ankstesnėse filtravimo stadijose monomerus vėl grąžinti i, šiame išradime pasiūlytą dimerizacijos procesą. Tai gali būti padaryta, surenkant frakcijas, kuriose yra didesni monomerinės ribonukleazės kiekiai, jas koncentruojant tangentinio srauto sistemos pagalba ir pridedant sujungiantįjį reagentą. Sujungimo reakcija vyksta taip pat kaip aprašyta aukščiau, ir lygiai taip pat rekomenduojama filtruoti. Po antrojo liofilizacijos ciklo gauti ribonukleazės dimerai kruopščiai sumaišomi su dimerizuotu produktu, gautu pirmajame cikle. Panaudojant tokias recirkuliavimo priemones, galima padi-dinti dimerinio produkto išeigą iki 30%.
[0017] Aukščiau aprašytu būdu gauti tirpalai, kuriuose pagrindinai yra dimeras, toliau valomi antrą kartą filtruojant, kad būtų geriau atskirti dimerai nuo monomerų ir oligomerų ir padidintas galutinio produkto švarumas. Šiuo atveju rekomenduojama liofilizuotą fer-mentų mišinį perleisti per jonitinę dervą, pvz., per kolonėlę užpildytą Sefadeksu G 50F. Be to, rekomenduojama, kad kolonėlė su jonitine derva turėtų pH apie 5; toks pH gali būti gaunamas, panaudojant 0,2 M natrio acetato buferį. Natrio acetato buferis, kurio pH 5, ruošiamas tirpinant apie 25 g natrio acetato trihidrato 1000 ml vandens.
[0018] Surinktos frakcijos, kurios pirmąjame filtravimo etape atitiko antrąjį piką, supilamos į kolonėlę su
[0019] Sefadeksu. Antrąj ame filtravimo etape rekomenduojama naudoti tas pačias medžiagas ir filtravimo sąlygas, kaip ir pirmąjame etape. Vėl registruojamas eliuavimo charakteris ir jis naudojamas identifikuoti ir atskirti reikalingas antrojo filtravimo etapo frakcijas. Šiuo atveju užrašytas eliuavimo charakteris rodo labai dideli, dimero pagrindini, piką ir du mažus antrinius pikus.
[0020] Ir vėl rekomenduojama analizuoti surinktas ribonu-kleazės fermentų frakcijas aukščiau aprašytu SDS-PAGE metodu. Ši analizė rodo, kad frakcijos, atitinkančios pagrindini, eliuavimo kreivės piką, turi labai švarų ribonukleazės dimerą. Dabar pagrindinio piko frakcijos sujungiamos, ir rekomenduojama jas koncentruoti, panaudojant tangentinio srauto sistemą. Be to, dabar rekomenduojama atskirti druskas, praleidžiant frakcijas per kolonėlę su Sefadeksu G 25. Druskų atskyrimui naudojama kolonėlė yra apie 25 cm diametro ir 65 cm aukš-čio; jos tūris - 32 litrai, srauto greitis - 15 1/val. Be to, naudojamas amonio hidrokarbonato 50 mM buferis.
[0021] Taip gautas produktas yra labai švari ribonukleazės kompozicija. Tačiau, norint paversti liofilizuotą ribo-nukleazės dimerą i, farmaciškai tinkamą formą, rekomenduojama atskirti iš jo endotoksinus. T.y. rekomenduojama gautą aukščiau aprašytu būdu išvalytą dimerini, produktą papildomai chromatografuoti, pvz., pralei-džiant ji, per Detoksigeli,, kuris turi savybę surinkti endotoksinus. Detoksigelio endotoksinų surišamoji galia yra maždaug 2 mg/ml. Kadangi galimas ir nespecifinis kitų komponenčių, kaip pvz. baltymų dimerai, surišimas, maksimaliai regeneruoti dimerini, produktą galima panaudojant buferius, turinčius fiziologini, pH reikšmių intervalą. Pridėjus 0,1-0,5 M druskos (pvz. NaCl) tirpalo, gaunamas reikiamas pH reikšmių intervalas ir pasiekiama maksimali dimero išeiga. Kaip taisyklė, chromatografuo j ant tirpalą, turinti, 1500 EU/ml per detoksikacinę kolonėlę, EU kieki, galima sumažinti iki mažiau negu 1 EU/ml.
[0022] Pašalinus endotoksinus iš ribonukleazės dimerų tirpalo, tirpalas surenkamas, filtruojamas steriliose sąlygose ir patalpinamas i, sterilią apvaliadugnę liofilizacijos kolbą. Endotoksinų kiekis galutiniame produkte gali būti nustatytas, panaudojant diagnostinį rinkinį, pvz. toki, kaip "Coatest R", išleidžiamą firmos Kabi-Vitrum, Miunchenas. Analizė paremta amebocitų (karduodegio) lizato (LA) aktyvavimu, veikiant endotoksinams. Aktyvuotas LA iš chromogeninio substrato S-2423 atskelia geltoną dažą - p-nitroaniliną - kurio kiekio kitimas, atspindintis endotoksinų lygį/ matuojamas spektrofotometru, esant A=4 05 nm. Jei endotoksinų yra mažiau negu 0,1 ng/ml, dimero tirpalas supilamas i, apvaliadugnę kolbą ir liofilizuoj amas.
[0023] Aukščiau aprašytas procesas gali būti kartojamas tiek kartų kiek reikia, kad būtų gaunamas reikiamas galutinio ribonukleazės dimero kiekis. Atskiros dimero partijos po valymo gali būti sterilizuojamos arba, jei reikia, papildomai liofilizuojamos ir taip gaunami vienalyčiai pavyzdžiai ribonukleazės dimero, kuris gali būti ypatingai naudingas, gydant daugeli, virusinės ir bakterinės kilmės susirgimų, tokių kaip nurodyti šiuo metu nagrinėjamoje paraiškoje PCT/US 88/01785. Be priešvirusinio ir antibakterinio veikimo, ribonukleazės dimerai gali duoti ir kitą gydantįjį efektą, pvz. juos naudojant, kaip priešuždegiminius ir antihistamininius preparatus, kurie neturi potencialaus citotoksiškumo, surišto su fermento monomerine forma. Šis būdas ypač patrauklus tuo, kad gali būti gaunami dideli išvalyto perspektyvaus ribonukleazės dimero kiekiai. Konkretūs galutiniai ribonukleazės dimerai, gauti šiame išradime aprašytu būdu, gali būti analizuojami, nustatant jų fermentinį aktyvumą sąveikoje su ribonukleino rūgšties tirpalais ir rezultatus registruojant spektrofotometru, pridėjus ribonukleazės dimero tirpalo. Taigi, šis būdas leidžia gauti labai švarų dimerini, fermentą, o taip pat ir nustatyti jo aktyvumą.
[0024] Žemiau duodami pavyzdžiai pateikti šio išradimo iliustracijos tikslais; jie jokiu būdu neriboja išra-dimo apimties.
[0025] Į cheminę stiklinę su dangteliu, kurioje yra 5 1 0,1 M dinatrio hidrofosfato dihidrato, pridedama 0,1 N NaOH ir nustatomas tirpalo pH lygus 10. Dinatrio hidrofosfato dihidrato tirpalas gaunamas, tirpinant 70,98 g dinatrio hidrofosfato dihidrato 1000 ml vandens. Po to, 25°C (kambario) temperatūroje pridedama, kaip sujun-giančiojo reagento, 5 g dimetilsuberimidato (Sigma, partijos Nr. 29F 3687), kuris per 1 min. ištirpsta. Tirpalo pH visą laiką kontroliuojamas ir palaikomas lygus 10, pridedant 0,1 N NaOH. Tirpalas visą laiką maišomas magnetiniu maišikliu 45 minutes 25°C tempe-ratūroje. Reakcija nutraukiama, sumažinant pH iki maž-daug 7, pridėjus 1 M HC1.
[0026] Laikas nuo laiko iš reakcijos mišinio imami mėginiai ir analizuojami gel-elektroforezės metodu. Monomerai, dimerai ir polimerai išsiskirsto SDS-gelyje. Naudojama monomerinė ribonukleazės forma turi molekulinę masę 15000, o dimerinė - dvigubai didesnę. Elektroforezės analizė parodė, kad dimero juostelė pastebima po 15 min. nuo sujungiančiojo reagento pridėjimo ir, reakcijai vykstant, ši juostelė tampa vis intensyvesnė. Be to, po 30 min. susidaro ribonukleazės oligomerinės formos.
[0027] Dimerizuotos ribonukleazės tirpalas koncentruojamas iki 800 ml, panaudojant tangentinio srauto sistemą (Millipor) . Į Millipor sistemą įeina: "Filtren Ausschluss 10000d" filtras, 7 barų slėgį atlaikanti olefininė membrana ir Werder 80 tipo 20-30 60079 siurblys. Įėjimo slėgis - 2 barai ir minimalus išėjimo slėgis - mažiau 0,2 barų. Sistemos našumas - 1 litras/vai. Sistemos ba-lastinis tūris yra 400 ml, todėl pabaigus koncentravimo procesą, sistema perplaunama 400 ml, todėl bendras tūris padidėja iki 1200 ml.
[0028] Norint atskirti dimerizacijos eigoje gautus oligomerus, sukoncentruotas ribonukleazės tirpalas filtruojamas per Sefadeksą G 50 F (Farmacia). Filtravimui skirta kolonėlė, kurios diametras 25,2 cm ir aukštis 120 cm, perplaunama 60 1 50 mM amonio hidrokarbonato tirpalo, kurio pH 8,6. 50 mM amonio hidrokarbonato tirpalas gaminamas iš 3,95 g amonio hidrokarbonato ir 1000 ml vandens. Po to, visas baltymo tirpalas (1200 ml) supilamas ant gelio sluoksnio, palaukiama kad susigertų ir plaunama reguliuojančiu buferiu. Frakcijos maždaug po 1000 ml surenkamos frakcijų kolektoriumi (LKB 2211 Suprec) maždaug 15 min. bėgyje; tai atitinka 80 ml/min. srauto greiti,. Eliuavimo charakteris registruojamas saviraščiu LKB 2210, esant registravimo greičiui 0,5 mm/min., o absorbcija nustatoma prietaisu LKB 2238 UVICOR SII, esant A=280 nm. Eliuavimo charakteris, kaip parodyta 1 brėž., turi tris pikus: pirmasis atitinka ribonukleazės polimerus, antrasis - dimerus ir paskutinysis - fermento monomerinę formą. 1 brėž. stora linija atvaizduotas ribonukleazės tirpalų absorbcijos charakteris, esant jautresniam detektavimui, negu atvaizduota plona linija.
[0029] Po to, ribonukleazių mišinys atskirose frakcijose analizuojamas, panaudojant SDS-PAGE elektroforezę pagal Thomas ir kt. PNAS, 7_2, 2626 (1975) metodiką. Pagal šią metodiką, 50 fil kiekvienos frakcijos sumaišoma su 50 fil dengiančio buferio ir mišinys šildomas 10 min. 95°C temperatūroje. Po to, 25 fil gauto mišinio įleidžiama i, gelio duobutes. Analizės eigoje kaip standartas naudojamas standartinis baltymų mišinys IV (Merck), kuriame yra molekulinių masių 12300, 30000, 45000, 66200 ir 76000 baltymai. Naudojamas dengiantis buferis susideda iš šių komponenčių:
[0030] Gel-elektroforezei atlikti gaminamas 18% skirstantysis gelis, ant kurio uždedama 3,3% koncentruojančio gelio. 18% skirstančiojo gelio tirpalas susideda iš šių komponenčių:
[0031] 3,9% akrilamido koncentruojančio gelio tirpalas susideda iš šių komponenčių:
[0032] SDS-PAGE gaunamas taip. Imama dvi stiklo (20x20 cm) plokštelės, gerai nuvalomos, nuplaunamos etanoliu ir padedamos viena ant kitos. Dviem 1 mm storio (ilgis 20 cm, plotis 1 cm) juostelėmis padaromas tarpas tarp plokštelių, kuris bus užpildytas geliu. Skiriančiosios juostelės įtvirtinamos kairiajame ir dešiniajame plokš-telių kraštuose. Apatinis kraštas užtaisomas lipnia audinio juostele, ir visi trys kraštai sutvirtinami spaustukais. Kraštai papildomai hermetizuojami 1% agarozės tirpalu. Kai agarozė sukietėja, tarpas tarp plokštelių, pastatytų vertikaliai, užpildomas aukščiau aprašytu skirstančiojo gelio tirpalu, kad liktų maždaug 3 cm iki stiklo plokštelės viršutinio krašto, ir Pas-tero pipete ant viršaus įleidžiama vandens. Maždaug po 30 min. gelis susipolimerina. Vandens sluoksnis paša-linamas, ir gelio viršus nuplaunamas aukščiau aprašytu koncentruojančio gelio tirpalu.
[0033] Po to, likęs tarpas iki pat krašto užpildomas koncen-truojančio gelio tirpalu, įstatomos mėginių rinkimo šukos, padarytos iš teflono taip, kad apatinis pavyz-džio duobutės kraštas būtų 1 cm aukščiau, negu skirstančiojo gelio paviršius. Maždaug po 15 min. koncentruojantis gelis susipolimerina, ir šukos ištrau-kiamos. Tada nuimama lipni audinio juostelė ir vertikaliai pastatytas gelis prijungiamas prie elektro-forezės prietaiso. Buferių kameros užpildomos elektroforezės buferiu (6 g tris-bazės (0,05 M), 28,5 g glicino (0,38 M), 1 g SDS (0,1%) ir 1000 ml H20), o duobutės vieną sykį apipurškiamos buferiu. Ribonu-kleazės dimero mėginiai pašildomi maždaug 10 min. 95°C temperatūroje su buferiu, ir jais užpildomi konteineris arba duobutės, skirtos mėginiams įvesti.
[0034] Elektroforezė vykdoma maždaug 4 vai., esant 20 mA srovei. Tačiau, jei norima pratęsti elektroforezę, tar-kim, per naktį, srovė sumažinama iki 6-8 mA. Judantis frontas tampa matomas, jei i, buferinį tirpalą pridedama 0,02% bromfenolio mėlio. Elektroforezė nutraukiama, kai judantis frontas pasiekia viršutini gelio kraštą. Skirstantysis gelis nupjaunamas, laikomas maždaug 30 min. fiksavimo tirpale ir išblukinamas, laikant 2 vai. išblukinimo tirpale, į kurį įeina 400 ml eta-nolio, 140 ml acto rūgšties ir 2000 ml vandens. Fiksuojantis tirpalas gaminamas, sumaišant 500 ml išblukinančio tirpalo su 12 ml dažo tirpalo, kuriame yra 1 g Kumassi mėlynojo (P 250, Merk), 50 ml vandens ir 50 ml metanolio. Baltymo juostelės tampa matomos, nes jas nudažo aukščiau minėto dažo tirpalas. Baltymų pėdsakų nustatymas, naudojant SDS-PAGE, parodė, kad dimerizuotos ribonukleazės kiekis mėginiuose laips-niškai didėja, bet juose yra ir polimerų.
[0035] Visos frakcijos, kuriose pagrindinai yra dimerinė ribonukleazės forma, sujungiamos ir koncentruojamos iki 800 ml tangentinio srauto sistemoje (Millipor). Membraninė diafragma vėl plaunama 400 ml tirpalo, praėjusio per membraną, ir rezultate bendras dimero tirpalo kiekis išsilaiko 1200 ml. Gautas tirpalas liofilizuojamas ir laikomas 4°C temperatūroje iki kito etapo. Tirpalas išdalinamas po 200 ml į 500 ml talpos apvaliadugnes kolbas ir liofilizuojamas. Kolbos patalpinamos į skystą azotą ir laikomos rotoriniame garintuve (Hedolf W 60) . Po to, kolbos gerai uždaromos ir laikomos 30 min. -30°C temperatūroje. Gautas produktas toliau liofilizuojamas, panaudojant standartines darbo metodikas.
[0036] Prieš kitą proceso etapą monomerinė ribonukleazė, nufiltruota pirmajame filtravimo etape, surenkama ir vėl leidžiama i, dimerizaci j os procesą. Tam tikslui nufiltruotos frakcijos, kuriose pagrindinai yra monomerinės formos ribonukleazė, sujungiamos ir koncentruojamos iki 4 1, panaudojant aukščiau minėtą tangentinio srauto sistemą. Po to, monomerinės frakcijos dimerizuo jamos, panaudojant sujungianti, reagentą pagal aukščiau aprašytą metodiką. Sujungus recirkuliuotus monomerus pagal aukščiau aprašytą metodiką, jie vėl filtruojami pagal jau aprašytą metodiką ir vėl gaunama dimerinė forma. Liofilizacijos produktai, gauti pirmajame dimerizacijos procese, sujungiami su produktais, gautais iš recirkuliacinių monomerų.
[0037] Norint geriau atskirti dimerus nuo monomerų ir oligomerų, sujungtas liofilizuotos ribonukleazės miši-nys, gautas pagal nurodytas operacijas, vėl chromato-grafuojamas per Sefadeksą G 50F. Chromatografijai naudojama kolonėlė su Sefadeksu G 50F (Farmacia) ir 0,2 M natrio acetato buferis, kurio pH 5. 0,2 M natrio acetato buferis gaunamas, tirpinant 27,22 g natrio acetato trihidrato 1000 ml vandens. Chromatografuojama tomis pačiomis sąlygomis ir ta pačia aparatūra, kaip ir pirmajame filtravimo etape.
[0038] Šiuo atveju gautas eliuavimo charakteris pavaizduotas 2 brėž. Diagramoje stora linija pavaizduota ribo-nukleazės absorbcija, esant didesniam detektavimo jautrumui, negu plona linija parodytu atveju. Esant didesniam detektavimo jautrumui, viduryje parodytas didelis pagrindinis pikas, kuris atitinka dimerą, šalia jo yra tik du silpni antriniai pikai. Fermentų, atrinktų iš pagrindinio piko frakcijų, analizė SDS-PAGE metodu rodo, kad pagrindiniame pike susikaupia didelis
[0039] dimerų kiekis, palyginus su pirmojo filtravimo etapo eliuavimo charakteriu.
[0040] Pagrindinio piko frakcijos sujungiamos ir koncentruojamos panaudojant tangentinio srauto sistemą. Kad būtų pašalintos druskos, surinktos frakcijos leidžiamos per kolonėlę su Sefadeksu G 25. Kolonėlės diametras - 25,2 cm, aukštis - 65 cm, bazinis tūris - 32 litrai, o kolonėlė dirba, esant 15 1/val. srautui. Visi antrojo filtravimo pagrindinio piko ribonukleazės tirpalai (maksimum 5 litrai) įleidžiami j, kolonėlę su Sefadeksu. Druskų pašalinimui naudojamas 50 mM amonio hidrokarbonato buferinis tirpalas. Druskų pašalinimo ciklas trunka 90 min., kurio metu surenkama 5 litrai. Likę ciklo produktai išmetami. Registruojamas eliuavimo charakteris, ir i, 5 1 talpos Šoto kolbą surenkamas vienintelio piko tirpalas. Išvalyto galutinio produkto pavyzdžių pėdsakai atidėti grafike /3-merkaptoetanolio redukcijos sąlygomis ir kaip neredukuoti pavyzdžiai. Išvalyto galutinio produkto SDS-PAGE analizė rodo, kad jame yra tik dimerinė ribonukleazės forma.
[0041] Kad liofilizuotas baltymas būtų paverstas i, farmaciškai tinkamą formą, reikia iš dimerinės ribonukleazės pašalinti endotoksinus. Tam tikslui išvalyti dimerai chromatografuojami per kolonėlę su Detoksigeliu. Kad būtų maksimaliai regeneruojamas ribonukleazės dimeras, reikia naudoti buferius, kurių pH būtų fiziologiniame intervale. Tai pasiekiama naudojant druskų tirpalus. Fermento tirpalas įleidžiamas i, kolonėlę su Detoksigeliu, kuris gali atskirti iki 1500 EU/ml. Prieš ir po kievieno ciklo Detoksigelis regeneruojamas 1% dezoksicholatu ir po to kruopščiai plaunamas vandeniu, kol ištekančiame vandenyje neberandama endotoksino. Kolonėlės tūris - 750 ml (diametras 9,5 cm, aukštis 14 cm), ir kolonėlė užpilama išlyginimui 0,1 M amonio hidrokarbonato tirpalu. Buferinis tirpalas, neturintis endotoksino, sumaišomas su steriliu vandeniu. 2 1 ribo-nukleazės tirpalo užpilama ant gelio sluoksnio ir paliekama, kol jis susigeria i, geli,. Po to, baltymas eliuuojamas išlyginančiu buferiu, ir renkamas i, ste-rilias chemines stiklines. Po to, tirpalas liofilizuojamas sterilioje apvaliadugnėje kolboje.
[0042] Endotoksinų kiekis preparate nustatomas, panaudojant diagnostinį rinkini, "Coatest R", gaminamą firmos Kabi-Vitrum, Miunchenas. Analizė paremta amebocitų lizato (LA) aktyvavimu endotoksinais (limulis-test) . Aktyvuotas LA atskelia iš chromogeninio substrato (S-2423) geltoną dažą - p-nitroaniliną, ir spalvos pakitimas nustatomas spektrofotometriškai, esant A=405 nm, kuris yra endotoksino kiekio matas. Gauta išvalyta dimerinė ribonukleazė, kurioje yra mažiau negu 0,1 ng/ml endotoksino, supilama i, apvaliadugnę kolbą ir liofilizuojama. Gautas produktas yra didelio švarumo laipsnio liofilizuoto ribonukleazės dimero tirpalas, kuri, galima laikyti, kol prireiks tolimesniam naudojimui.
[0043] Dimerinės ribonukleazės, gautos šiame išradime aprašomu būdu, fermentinis aktyvumas gali būti nustatytas pagal Kunitz, J. Gen. Physiol. 2A_, 15 (1940) aprašytą aktyvumo nustatymo metodiką. Nustatymas paremtas tuo faktu, kad veikiant ribonukleazei ribonukleininę rūgšti,, jos absorbcijos spektras UV srityje pasislenka i, trumpųjų bangų sritį. 292-305 nm intervale nukleino rūgšties absorbcija mažėja, nes mažėja jos koncentracija dėl ribonukleazės sukeltos nukleino rūgšties hidrolizės. Reakcijos pradžioje šis mažėjimas yra tiesinis, ir jis gali būti panaudotas, kaip fermentinio aktyvumo matas.
[0044] Šiuo atveju nukleino rūgšties kiekio mažėjimas buvo matuojamas, kai A=300 nm.
[0045] Analizė atliekama 25°C temperatūroje, naudojant termo-statuojamą kiuvetę, ir visi tirpalai prieš naudojimą buvo termostatuojami 5 min. 25°C temperatūroje. Stebimi spektrofotometro parodymai, kai A=300 nm. Reakcijos tūris buvo 3 ml, reakcija vykdoma 3 ml talpos kiuve-tėje, kurios sluoksnio storis yra 1 cm.
[0046] Reakcijos mišinys ruošiamas, imant 1,5 ml ribonukleino rūgšties tirpalą, 0,05-0,5 ml tiriamo pavyzdžio, įskai-tant ribonukleazės frakcijas, ir pridedant vandens iki 10 ml. Ribonukleino rūgšties tirpalas gaminamas, ištir-pinant 80 mg ribonukleino rūgšties natrio druskos (Boheringer) 50 ml acetatinio buferio. Acetatinis buferis yra 0,1 M buferis, kurio pH 5, gaunamas, sumaišant 0,57 ml ledinės acto rūgšties su apytikriai 80 ml distiliuoto vandens, o pH nustatomas lygus 5 su 0,1 N NaOH tirpalu, po to praskiedžiama iki 100 ml distiliuotu vandeniu ir filtruojama steriliose sąly-gose. Tiriamo pavyzdžio, įskaitant ir ribonukleazės dimerus, tirpalai gaminami, tirpinant 5 mg ribonu-kleazės dimero 5 ml distiliuoto vandens, ir praskie-džiami taip, kad nustatomos hidrolizės greičio reikšmės būtų tinkamame intervale.
[0047] Ribonukleino rūgšties ir tiriamojo pavyzdžio tirpalai sumaišomi kiuvetėje ir nukleino rūgšties kiekio mažė-jimas sekamas apie 20 min., panaudojant Spectronik 1001 (Bosh and Lomb) spektrofotometrą. Registruojama absorbcija; tiesinis jos kitimas tęsiasi apie 8 minutes. 25°C temperatūroje reakcija vykdoma iki pabaigos; tai užtrunka apie 3 valandas. Po to, tirpalai vėl analizuojami, kad būtų gautos galutinės absorbcijos reikšmės. Matavimas kartojamas du kartus, ir iš gautų rezultatų vedamas vidurkis.
[0048] Fermentiniam aktyvumui išskaičiuoti reikia nustatyti nukleino rūgšties koncentracijos mažėjimą reakcijos pradžioje (E0) ir gale (Eg) per laiko vienetą, AE/min., tiesiniame pradiniame intervale. Tiriamo ribonukleazės dimero pavyzdžio praskiedimą reikia parinkti taip, kad AE/min. neviršytų 0,007. Kontroliniai dydžiai gaunami iš reakcijos mišinio, pagaminto iš ribonukleazės ir vandens, ir juos reikia atimti iš nustatytų dydžių. Fermentiniu vienetu laikomas kiekis fermento, kuriam esant reakcijos tirpale šiomis sąlygomis, substrato, kurio koncentracija yra 25%, kiekio sumažėjimas per minutę sudaro 100% dydžio E-Eg. Didžiausia galima sumažėjimo reikšmė, kai matuojama, esant A=300 nm, lygi E-Eg. Santykinis fermento aktyvumas išskaičiuojamas iš šio santykio:
[0049] Šio išradimo dimerinės ribonukleazės turėjo dideli, fermentini, aktyvumą.
1. Išvalyto ribonukleazės dimero gavimo būdas, besiskiriantis tuo, kad jis susideda iš šių stadijų:a)ribonukleazės dimero tirpalo gavimo, pridedant ribonukleazės monomerą i, buferini, tirpalą, kurio pH reikšmė nustatoma lygi mažiausiai 9;b)suberimidato, kaip sujungiančiojo reagento, pridėjimo i, tirpalą, palaikant tirpalo pH lygų mažiausiai 9, kad ribonukleazės monomerai dimerizuotųsi;c)dimerizacijos reakcijos nutraukimo reikiamu momentu,sumažinant pH reikšmę iki apytikriai 7;d)dimerizuotos ribonukleazės tirpalo pirmojo filtravimo etapo, kuriame tirpalą leidžia per katijonitinę dervą ir renka frakcijas, turinčias pagrindinai dimerizuotą ribonukleazės formą;e)antrojo filtravimo etapo, kuriame pirmajame filtravimo etape surinktas frakcijas leidžia per kati-jonitinę dervą, irf) didelio švarumo laipsnio dimerinės ribonukleazės produkto surinkimo iš antrojo filtravimo etapo.
a)ribonukleazės dimero tirpalo gavimo, pridedant ribonukleazės monomerą i, buferini, tirpalą, kurio pH reikšmė nustatoma lygi mažiausiai 9;b)suberimidato, kaip sujungiančiojo reagento, pridėjimo i, tirpalą, palaikant tirpalo pH lygų mažiausiai 9, kad ribonukleazės monomerai dimerizuotųsi;c)dimerizacijos reakcijos nutraukimo reikiamu momentu,sumažinant pH reikšmę iki apytikriai 7;d)dimerizuotos ribonukleazės tirpalo pirmojo filtravimo etapo, kuriame tirpalą leidžia per katijonitinę dervą ir renka frakcijas, turinčias pagrindinai dimerizuotą ribonukleazės formą;e)antrojo filtravimo etapo, kuriame pirmajame filtravimo etape surinktas frakcijas leidžia per kati-jonitinę dervą, irf) didelio švarumo laipsnio dimerinės ribonukleazės produkto surinkimo iš antrojo filtravimo etapo.f) didelio švarumo laipsnio dimerinės ribonukleazės produkto surinkimo iš antrojo filtravimo etapo.2. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad ribonukleazės monomero tirpalo pH nustato apie 10.
3. Gavimo būdas pagal 2 punktą, besiskiriantis tuo, kad monomerinės ribonukleazės tirpalo pH, lygų apytikriai 10, nustato pridedant NaOH.
4. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad monomerinės ribonukleazės tirpinimui naudojamas buferis yra dinatrio hidrofosfato dihidrato buferinis tirpalas.
5. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad sujungiantįjį reagentą prideda i, ribonukleazės monornero tirpalą, palaikant tirpalo pH lygų apytikriai 10.
6. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad suberimidatinis sujungiantysis reagentas yra dimetilsuberimidatas.
7. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad dimerizacijos stadiją atlieka kambario temperatūroj e.
8. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad dimerizacijos stadiją atlieka visą laiką maišant tirpalą.
9. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad nutraukia dimerizacijos reakciją, pridedant HC1.
10. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad prieš filtravimo etapus koncentruoja dimerizuotos ribonukleazės tirpalą, panaudojant tangentinio srauto sistemą.
11. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad atlieka pirmąjį filtravimo etapą, panaudojant susiūtą dekstraną, kaip jonitinę dervą.
12. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad ribonukleazės monornero tirpale yra 40-60 g ribonukleazės monornero ir 4,6 1 buferio, o sujungiančiojo reagento prideda 4-6 g.
13. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad pirmajame filtravimo etape surinktas frakcijas analizuoja gel-elektroforeazės metodu.
14. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad pirmajame filtravimo etape surinktas frakcijas liofilizuoj a.
15. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad frakcijas, surinktas pirmajame filtravimo etape, kuriose yra pagrindinai monomerinė ribonukleazė, vėl leidžia i, dimerizaciją.
16. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad atlieka antrąjį filtravimo etapą, panaudojant susiūtą dekstraną kaip jonitinę dervą.
17. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad atlieka antrą j i, filtravimo etapą, esant pH apie 5.
18. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad pH nustato antrajame filtravimo etape, naudojant natrio acetato buferi,.
19. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad antrajame filtravimo etape surinktas frakcijas analizuoja gel-elektroforezės metodu.
20. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad po antrojo filtravimo etapo atlieka druskų pašalinimą.
21. Gavimo būdas pagal 20 punktą, besiskiriantis tuo, kad druskas pašalina, panaudojant kolonėlę su susiūtu dekstranu G 25.
22. Gavimo būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad turi papildomą endotoksinų pašalinimo iš gauto išvalyto ribonukleazės dimero produkto stadiją.
23. Gavimo būdas pagal 22 punktą, besiskiriantis tuo, kad endotoksinus pašalina, leidžiant per kolonėlę su detoksigeliu.